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Hola.
Un Trichoglossum que apareció en el jardín de mi casa, es la primera vez que encuentro un Trichoglossum en la República Dominicana.
Ejemplares fotografiados entre los días 9 y 20 de enero, fruto de varias recolectas, brotando entre el césped y prácticamente al nivel del mar:
Trichoglossum octopartitum Mains
Zona del jardín donde aparecieron los ejemplares:
Unas pocas imágenes correspondientes a varios brotes:
Pelos de la superficie del pie a 40 aumentos:
Un fusionado de imágenes de la sección a 40 aumentos:
El himenio en agua a 100 aumentos:
Ascos y pelos en agua a 100 aumentos:
El himenio en solución de Lugol a 100 aumentos:
Los pelos en agua a 400 aumentos:
Ascos en agua a 400 aumentos, estos ascos con unas medidas de (174.9) 178.8 - 203.4 (204.9) × (15.2) 16.1 - 21.9 (22.2) µm.
Ascos y paráfisis en Lugol a 400 aumentos:
Aparato apical amiloide en Lugol a 400 aumentos:
Ascos en agua a 1000 aumentos, octospóricos:
Asco en Lugol a 1000 aumentos:
Las paráfisis a 1000 aumentos en solución de Rojo Congo diluido:
Ascosporas en solución de Lugol (arriba) y en Reactivo de Melzer (abajo)
Esporas en agua, mayoritariamente con 7 septos, lo que nos da 8 celdas, de ahí el epíteto de "octopartitum":
Se indica en la bibliografía que la especie puede llegar a presentar hasta 9 septos, añado una imágen en la parte de arriba con esporas de menos de 7 septos y en la parte de abajo con esporas de 8 a 9 septos:
Con unas medidas de las esporas libres en agua de:
(95.7) 98 - 120.3 (125.3) × (4.4) 5.4 - 6 (6.2) µm
Q = (15.7) 17.8 - 21.6 (23.1) ; N = 16
Me = 111.6 × 5.7 µm ; Qe = 19.8
Las esporas libres en Lugol con unas medidas de:
(88.2) 88.8 - 127.1 (128.7) × (4.5) 4.9 - 6.1 (6.7) µm
Q = (14) 15.7 - 22.4 (28.2) ; N = 28
Me = 109.1 × 5.5 µm ; Qe = 20.1
Y las esporas obtenidas por esporulación natural y en agua con unas medidas de:
(74.1) 85.6 - 130.2 (139.5) × (4.2) 4.6 - 5.7 (5.9) µm
Q = (15.6) 17.2 - 24.2 (26.3) ; N = 50
Me = 106.2 × 5.1 µm ; Qe = 20.7
Determinación hecha siguiendo el criterio del documento de MycoKeys 92: 95–108 (2022), con el título de "Two new species of Trichoglossum (Geoglossaceae, Ascomycota) from south Mexico", en el mismo documento se publican unas Claves para las especies de Trichoglossum Americanas, añado una captura de pantalla con las Claves:
Como posibles confusiones tenemos el muy parecido Trichoglossum velutipes, este con ascos tetraspóricos, con esporas de 7 septos tenemos el Trichoglossum confusum, con esporas mucho más cortas (solo hasta 75 µm.), y también muy parecido tenemos el Trichoglossum walteri, originario de Australia, y solo referenciado en Brasil, Jamaica y EE. UU.
Saludos.
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Hola.
Un muy diminuto hongo que apareció de propina, al estudiar unos pocos ejemplares de Physalacria sp., fotografiados y recolectados el 31 de enero pasado brotando sobre una pequeña rama del suelo en descomposición de Ficus sp.
Distoseptispora septata Jian Ma & Y.Z. Lu
Superficie de la madera a 100 aumentos:
Sección a 100 aumentos, donde se pueden ver los conidios en vista lateral:
Unos conidios en agua a 400 aumentos:
Los conidios a 1000 aumentos en el mismo medio:
Estos conidios en agua con unas medidas de:
(64.7) 76.4 - 98.9 (135.5) × (9.3) 9.5 - 12.3 (13) µm
Q = (5) 6.2 - 10.2 (11.2) ; N = 9
Me = 88.5 × 11.1 µm ; Qe = 8.1
Estudio contrastado con la información del documento de "Journal of Fungi" de noviembre de 2022 con el título de "Multi-Gene Phylogenetic Analyses Revealed Five New Species and Two New Records of Distoseptisporales from China" en el que indican para la Distoseptispora septata un número de septos de hasta 25 y unas medidas para sus conidios de 22–179 x 10–16 µm., con una media de 89 x 13 µm, parámetros perfectamente concordantes con los del presente estudio.
Añado una imágen extraída del mismo documento con la microscopía de la especie:
Saludos.
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Hola.
Una Melanoleuca recolectada durante el congreso de la SIM, el día 6 de diciembre del pasado año, bajo Pinus halepensis y Quercus rotundifolia:
Melanoleuca romanensis Antonín, Ďuriška, Jančovič.
Las hifas de la suprapellis en agua:
Parte superior del pie en agua, con algunas hifas terminales a modo de caulocistidios:
Hifas del estípite en agua:
Arista laminar de un ejemplar desarrollado en solución de Rojo Congo, sin elementos diferenciados de los basidios o basidiolos:
En la microscopía de un ejemplar joven, al observar la arista laminar, más de lo mismo:
Los basidios de la arista laminar en Reactivo de Melzer:
Los basidios de la cara laminar en solución de Rojo Congo:
Los basidios de la cara laminar en Reactivo de Melzer:
Las esporas en Reactivo de Melzer, con reacción amiloide:
Y por último las esporas en agua:
Estas esporas obtenidas por esporulación natural y en agua con unas medidas de:
(6.9) 7.7 - 9 (9.2) × (5.3) 5.9 - 6.9 (7.4) µm
Q = (1.2) 1.24 - 1.5 (1.6) ; N = 40
Me = 8.4 × 6.3 µm ; Qe = 1.3
Añado una imágen con el árbol filogenético:
Aquí nuestra especie se encuentra dentro del Clado de la secuencia de la especie tipo de la Melanoleuca romanensis, y muy cerca de esta nos encontramos con una secuencia de la Melanoleuca decembris, especie de la que sospechamos desde el primer momento.
En esta ocasión si opté por el análisis molecular fue tan solo porque no pude observar queilocistidios, y todos los autores consultados describen a la Melanoleuca decembris, con una gran cantidad de queilocistidios.
La Melanoleuca romanensis es un taxón de reciente creación (2023), muy cercano a la Melanoleuca decembris.
Saludos.
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Hola.
Un diminuto ascomiceto globoso, que apareció parasitando unos ascomas de Ditrype stygma, en compañía de una Nectriaceae, probablemente Dialonectria diatrypicola, esta última pendiente del resultado del análisis molecular.
Tubeufia cerea (Berk. & M.A. Curtis) Höhn
De hecho los ejemplares aparecieron al intentar obtener el anamorfo de la Nectriaceae, dato muy importante a nivel taxonómico, y lo hicieron después de cultivar en cámara húmeda por espacio de un par de semanas del fino tallo con la supuesta Dialonectria:
Los ascomas de color amarillento y compartiendo espacio con ellos, los ascomas rojizos de menor tamaño de la Nectriaceae, a 40 aumentos:
Las hifas del peridio en reactivo de Melzer:
Las hifas del excípulo medular en agua:
Los ascos en agua:
Los ascos en reactivo de Melzer:
Las ascosporas en reactivo de Melzer:
Las ascosporas en agua:
Estas ascosporas libres en agua con unas medidas de:
(44.2) 48.3 - 57.8 (63) × (3.5) 3.9 - 4.5 (4.6) µm
Q = (10.7) 11.6 - 13.9 (14.2) ; N = 30
Me = 52.9 × 4.2 µm ; Qe = 12.5
Saludos.
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Hola.
Un Corticial del pasado 1 de noviembre, de color perfectamente blanco, brotando sobre la superficie de la madera descortezada de una rama del suelo de pino.
Lyomyces aff. niveomarginatus Qi Yuan & C.L. Zhao
Hifas subiculares fibuladas en solución de amoníaco:
El himenio con los cistidios en el mismo medio:
Los cistidios en solución de Rojo Congo diluido:
Los cistidios en Reactivo de Melzer:
Los basidios en solución de Rojo Congo:
Los basidios en Reactivo de Melzer:
Y una composición de las esporas observadas en agua:
Estas esporas en agua con unas medidas de:
(5.4) 5.8 - 6.8 (7.1) × (3.2) 3.7 - 4.3 (4.5) µm
Q = (1.4) 1.5 - 1.7 (1.9) ; N = 35
Me = 6.2 × 4 µm ; Qe = 1.6
Añado como colofón el árbol filogenético:
Aquí mi especie, la Lyomyces sp JTP2753/25, se encuentra alineada dentro del Clado de la secuencia del material tipo del Lyomyces niveomarginatus, en medio de unas secuencias registradas como Lyomyces sp.
Como especies más cercanas a nivel molecular vemos el Lyomyces subcylindricus, y ya un poco más alejados el Lyomyces neocrustosus, el Lyomyces vietnamensis y el Lyomyces crustosus.
Saludos.
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Hola.
Un Corticial del 1 de noviembre del pasado año, con los datos microscópicos obtenidos no pude llegar a ninguna conclusión, por lo que tuve que recurrir los datos moleculares, la secuenciación del gen ITS da una coincidencia por identidad del 99,29% con la Phanerochaete ericina, según Index Fungorum actualmente Peniophora ericina.
Peniophora ericina Bourdot, Rev. Sci. Bourb. Centr. Fr.
Syn: Phanerochaete ericina
Superficie de los basidiomas a 20 aumentos:
Los cistidios en solución de Rojo Congo diluido, estos cistidios con unas medidas de (32.3) 36.8 - 50 (52.2) × (3.9) 4.3 - 4.8 (5) µm., Me = 42.5 × 4.5 µm.
Los cistidios en reactivo de Melzer:
Los basidios en solución de Rojo Congo:
Los basidios en Reactivo de Melzer:
Los basidios en solución de KOH:
Las esporas en Reactivo de Melzer, inamiloides:
Y las esporas en agua:
Estas esporas obtenidas por esporulación natural y en agua con unas medidas de:
(5.5) 5.7 - 6.6 (6.9) × (2.6) 2.8 - 3.2 (3.6) µm
Q = (1.7) 1.8 - 2.3 (2.4) ; N = 30
Me = 6.1 × 3 µm ; Qe = 2
Añado la imágen con el árbol filogenético:
Atendiendo a que aunque se encuentra bien situada dentro del Clado de la Phanerochaete ericina, teniendo en cuenta las diferencias a nivel molecular con las secuencias más próximas, quizás en esta ocasión lo más adecuado sería archivar la carpeta como Phanerochete aff. ericina, tal y como ya indico en el árbol.
Saludos.
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Hola.
Una Hyphodontia del 16 de noviembre pasado, recolectada bajo hayas y robles, durante el encuentro con los Fungimaters por la Sierra de Ultzama.
Fructificaciones de color blanco puro, parasitando unos basidiomas en descomposición de Porostereum spadiceum:
Superficie de los basidiomas a 20 aumentos:
Las hifas subhimeniales en solución de Rojo Congo diluido, que se corresponden con un sistema hifal monomítico, con solo hifas generativas fibuladas:
Cistidios septados y fibulados (septocistidios):
Los septocistidios en agua:
Y por último el himenio con los basidios:
Las esporas maduras libres observadas en las muestras preparadas con unas medidas de:
(4.9) 4.92 - 5.4 (5.6) × (3.4) 3.5 - 4.1 (4.4) µm
Q = (1.2) 1.25 - 1.4 (1.5) ; N = 20
Me = 5.2 × 3.8 µm ; Qe = 1.4
Teniendo en cuenta la presencia de septocistidios y sus otras características microscópicas, desde el primer momento tenía claro que se trataba de una Hyphodontia y que muy probablemente estaría ante un aspecto un tanto excepcional de la Hyphodontia pallidula.
Atendiendo al criterio de "Les Champignons de Suisse", la Hyphodontia pallidula se asociaría a madera en descomposición de coníferas, además de presentar unos basidiomas de color ocre y unas esporas con unas medidas considerablemente por debajo, según esta misma fuente otorgan a la Hyphodontia pallidula unas medidas esporales de 3,5-4 x 2-2,5 (3) µm., además describen a la especie como rara o poco común, entiendo que esta circunstancia será propia de Suiza, ya que de mis recogidas en Nuestra Península, dispongo de hasta 11 estudios distintos realizados a la especie, todos ellos sobre madera de coníferas y en todos ellos las medidas de sus esporas se encuentran dentro del rango de las indicadas por Les Champignons de Suisse" y bastante lejos de las medida de las esporas del presente estudio.
Añado una imágen con el árbol filogenético:
En el árbol vemos a mi especie en un subclado cercano al Clado de lo que se puede considerar como Hyphodontia pallidula, con una coincidencia a nivel molecular del 96,8%, del todo insuficiente para poder considerar seriamente la propuesta.
Vemos además una secuencia un poco más cercana a mi propuesta, en este caso con una coincidencia del 98,71%, añado una captura de pantalla de esta secuencia:
Esta se corresponde con un hongo no cultivado, de un artículo con el título de "Metacodificación de las comunidades microbianas asociadas con el azafrán alpino (Crocus sativus) cultivado en campo inoculado con hongos AM", enviado a la Universidad de Turín el 22 de octubre de 2020, probablemente otra Hyphodontia muy cercana a la mía.
Dado que a día de hoy mi propuesta sigue sin apellido, aún teniendo del todo claro que no se trata de esta, no me queda más remedio que archivarlo como lo más parecido, es decir Hyphodontia aff. pallidula.
Saludos.
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Hola.
Hoy os voy a presentar una Scutellinia que tenía pendiente de identificación de un par de años atrás.
Las imágenes y la consecuente recogida de muestras la realicé el 28 de febrero de 2024, en el espacio Natural de "Laguna Bávaro", en su momento los datos microscópicos solo apuntaron a que no se trataba de ninguna de las dos especies que me había encontrado anteriormente por la zona (la Scutellinia umbrorum y la Scutellinia vitreola), y utilizando las Claves de que dispongo del género, me conducían a la Scutellinia pulchrornata, nombre provisional y no reconocido.
Ante la imposibilidad de poder poner apellido a esta especie, y ya tan solo para optimizar un envío de muestras, mandé una muestra a secuenciar, el análisis molecular del gen ITS, indica una coincidencia del 99,83% con la Scutellinia jungneri OQ024063.
Scutellinia jungneri (Henn.) Clem
Ascomas brotando de manera masiva sobre la superficie de restos de madera en descomposición del suelo:
Los ascomas a 20 aumentos:
Pelos marginales con unas medidas de (0.5) 0.7 - 1.2 (1.3) × 0.1 mm.
Los pelos marginales en agua a 40 aumentos:
Pelos marginales a 100 aumentos:
Base de los pelos multifida a 400 aumentos:
Ascos en agua a 1000 aumentos:
Las paráfisis en agua:
Detalle del pigmento intracelular de las paráfisis, que es el responsable del color anaranjado de los apotecios:
Las esporas en agua:
Y por último las esporas en Azul de Lactofenol, para poder observar mejor su ornamentación:
Con unas medidas de las esporas libres en las muestras de:
(18.2) 19.6 - 21.5 (22.3) × (10.9) 11.2 - 12.7 (13.1) µm
Q = (1.6) 1.7 - 1.8 (2) ; N = 30
Me = 20.5 × 11.8 µm ; Qe = 1.7
Y con unas medidas de las esporas obtenidas por esporulación natural y en agua de:
(18.5) 19 - 20.3 (20.9) × (10.3) 11 - 12.4 (12.7) µm
Q = (1.5) 1.6 - 1.78 (1.8) ; N = 36
Me = 19.7 × 11.8 µm ; Qe = 1.7
Añado la imágen con el árbol filogenético:
Vemos a mi especie, la Scutellinia sp. JTP 2756/24, alineada dentro del Clado de la Scutellinia jungneri y otras dos secuencias de Scutellinias sp., y en otros Clados distintos, por un lado la Scutellinia vitreola, con una coincidencia a nivel molecular de tan solo el 87,15% y la Scutellinia umbrorum con una coincidencia del 86,90%.
Parece claro que en una misma zona pueden aparecer hasta 3 especies de Scutellinias distintas.
Curiosamente de la Scutellinia jungneri, apenas podemos encontrar información en línea, y ni tan siquiera aparece en ninguna de las 4 Claves de las que dispongo actualmente del género.
Saludos.
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Hola.
Un basidiomiceto hydnoide del día 13 de octubre del pasado año, este es un obsequio de Antonio Couceiro (Necho), para el va mi más sincero agradecimiento.
En el momento de su estudio no pude obtener esporas, aunque la especie me pareció lo suficientemente interesante para intentar llagar a su identidad mediante los datos moleculares. La secuenciación del gen ITS mostró una coincidencia por identidad del 100% con el Sistotrema confluens KX610712.
Admito que en esta ocasión jamás habría apostado por un género como Sistotrema, un género del que dispongo de 10 estudios distintos, pertenecientes a 4 especies del género, ya que en todos los casos se corresponden con basidiomas resupinados, y además de muy poco grosor, nada que ver con el aspecto de Hydnellum de este caso.
Sistotrema confluens Pers
Syn: Hydnotrema confluens e Irpex confluens
Las hifas hialinas de la suprapellis en agua:
Las hifas tramales en solución de Rojo Congo:
Las hifas tramales en agua:
Hifas terminales de los extremos de los acúleos en solución de Rojo Congo diluido:
Y el himenio en el mismo medio, donde pueden intuírse los basidios:
Añado una imágen con el árbol filogenético:
En el árbol se puede ver mi propuesta perfectamente alineada con varias secuencias del Sistotrema confuens, curiosamente no aparece ninguna otra especie de Sistotrema en el árbol y como especies más cercanas nos encontramos con varias especies de Clavulina, con lo que personalmente no encuentro adecuado el incluir esta especie dentro del género Sistotrema, y considero que en este caso quizás, ya tan solo por su aspecto, lo más adecuado sería ubicarlo dentro de Irpex o Hydnotrema donde ya estaba ubicado anteriormente, o ya crear un nuevo género para esta especie.
Saludos.
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Hola.
Un Clitocybe recolectado durante el Congreso de la SIM, el 6 de diciembre pasado, bajo Pinus halepensis y Quercus rotundifolia, como que las extraordinarias medidas de las pocas esporas observadas, no se correspondían con lo que presumiblemente se podría tratar, opté por el análisis molecular, este no hizo más que corroborar nuestras sospechas, ya que estábamos ante la:
Atractosporocybe inornata (Sowerby) P. Alvarado, G. Moreno & Vizzini
Syn: Clitocybe inornata
Las hifas de la suprapellis en agua:
Las hifas de la trama laminar en solución de Rojo Congo diluido:
La arista laminar sin elementos diferenciados de los basidios:
Los basidios de la cara laminar, mayoritariamente tetraspóricos, con algún basidio bispórico disperso:
Y una espora libre con sus medidas:
Estas extraordinarias medidas esporales, no se corresponden con las medidas que citan los autores para la Clitocybe inornata, según el criterio de "Les Champignons de Suisse" de 6.8 - 9.2 x 2.4 - 3.4 µm., y atendiendo al criterio de "Funga Nordica" de 8-10.5 x 3-4 μm. con unas medidas en ambos casos por debajo, muy en especial en lo que concierne a la anchura.
Si bien podemos admitir que en circunstancias de frio intenso, los basidiomicetos acostumbran a responder presentando basidios bispóricos y hasta incluso monospóricos, y estos presumiblemente podrían dar lugar a esporas con un mayor tamaño, jamás habría podido pensar que esta circunstancia pudiera llegar a ser tan acentuada.
Para cerrar el tema añado el árbol filogenético:
Aquí vemos nuestra especie alineada con una coincidencia del 100% con la Atractosporocybe inornata = Clitocybe inornata, y como especies más próximas a nivel molecular, tenemos la Clitocybe sclerotoidea y la Clitocybe subditopoda.
Saludos.
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