Josep Torres
@josep
8233
5/12/2016, 12:15:38 PMHohenbuehelia nigra (Schwein.) Singer (1951)
Hola a tod@s.
Adjunto imágenes de una especie encontrada el pasado 10 de Abril bajo un tronco de roble compartiendo hábitat con la Chlorocyboria aeruginascens, es de las que más me ha costado de identificar, precisando incluso de ayuda exterior.
Hohenbuehelia nigra
Carpóforos de pequeño tamaño, de apenas dos cm. la mayor, sombrero de color grisáceo azul oscuro, más claro en el borde del sombrero, con forma de abanico y de cutícula como gelatinosa y elástica. Himenio con láminas separadas y abundantes lamélulas concoloras con el sombrero y tonos más anaranjados y claros en los ejemplares
jóvenes. De pié `practicamente inexistente y de olor y sabor harinosos, bastante insipido. Esporada en masa de color blanco.
Composicion-2-3-4.avif)
Por la parte de abajo de un tronco de roble tal y como la encontre.
Ampliacviónhimenio.avif)
Detalle ampliado del himenio
Ampliacionprimordio.avif)
Ampliación de un primordio.
Pileipelliselásticax400.avif)
Pileipellis elástica a 400 aumentos.
Pileipellisgelificadax1000.avif)
Pileipellis a 1000 aumentos (gelificada)
Hifasx400.avif)
Hifas de la carne a 400 aumentos.
Cistidiosx1000.avif)
Cistidiosx100031a43micras.avif)
Dos imágenes de los cistidios metuloides y fuertemente incrustados en la parte superior, entre 31 y 43 micras..
Queilocistidios a 1000 aumentos, de entre 31 y 35 micras.
Cuatro imágenes de los basidios (tetraspóricos).
Esporas en rojo congo diluido y mis mediciones.
Todo encaja a la perfección con la especie propuesta.
Espero que os guste.
Un saludo a tod@s.
Adjunto imágenes de una especie encontrada el pasado 10 de Abril bajo un tronco de roble compartiendo hábitat con la Chlorocyboria aeruginascens, es de las que más me ha costado de identificar, precisando incluso de ayuda exterior.
Hohenbuehelia nigra
Carpóforos de pequeño tamaño, de apenas dos cm. la mayor, sombrero de color grisáceo azul oscuro, más claro en el borde del sombrero, con forma de abanico y de cutícula como gelatinosa y elástica. Himenio con láminas separadas y abundantes lamélulas concoloras con el sombrero y tonos más anaranjados y claros en los ejemplares
jóvenes. De pié `practicamente inexistente y de olor y sabor harinosos, bastante insipido. Esporada en masa de color blanco.
Por la parte de abajo de un tronco de roble tal y como la encontre.
Detalle ampliado del himenio
Ampliación de un primordio.
Pileipellis elástica a 400 aumentos.
Pileipellis a 1000 aumentos (gelificada)
Hifas de la carne a 400 aumentos.
Dos imágenes de los cistidios metuloides y fuertemente incrustados en la parte superior, entre 31 y 43 micras..
Queilocistidios a 1000 aumentos, de entre 31 y 35 micras.
Cuatro imágenes de los basidios (tetraspóricos).
Esporas en rojo congo diluido y mis mediciones.
Todo encaja a la perfección con la especie propuesta.
Espero que os guste.
Un saludo a tod@s.
Listado de adjuntos
Una bonita especie cuando los ejemplares son jóvenes, Josep. Desconozco su micro, por lo que, en ese sentido, poco puedo ayudar. Desde luego, su aspecto macroscópico es coincidente.
En cuanto a la utilización de reactivos, que pregunta Héctor, Josep ha dicho o esencial. Como ya comentamos en alguna ocasión, la mayor parte de las observaciones se pueden (y en algunos casos, se deben) hacer en agua. El rojo congo es muy frecuentemente utilizado en la observación de los basidiomicetes. Personalmente, no lo diluyo. Pero sí que hay que aplicar una gota pequeña, porque si no se vuelve todo tan rojo que ya no podemos observar nada. Tengamos no obstante en cuenta que, si queremos estudiar un badiomycete debemos tener varios ejemplares, porque hay características que sólo se pueden observar en los jóvenes y otras en los maduros. Un ejemplar muy maduro se vuelve un mundo de esporas y ya no podemos discernir nada.
El azul de lactofenol se utiliza, entre otras cosas, para poner de manifiesto la ornamentación de las esporas. Por ejemplo, es muy utilizado con las Scutellinia, Las Peziza o las Cheylimenia, en las que la ornamentación es esencial para ayudar en la identificación.
IKI y reactivo de Melzer son muy utilizados con los ascomicetes, como indica Josep. Pero recordemos que siempre debemos preparar también pruebas en agua.
Podemos citar más reactivos, pero con esos 4, más o menos, tienes para ir tirando. El mundo de la micología es tan amplio, que no podemos abarcarlo todo de sopetón. En micrscpía, según mi parecer, conviene ir formándose con géneros que resultan más fáciles antes de meterse en líos complejos. No hay cosa que cause más insatisfacción que no estar seguro al 100% de una identificación, después de un estudio pormenorizado.
Un abrazo.
En cuanto a la utilización de reactivos, que pregunta Héctor, Josep ha dicho o esencial. Como ya comentamos en alguna ocasión, la mayor parte de las observaciones se pueden (y en algunos casos, se deben) hacer en agua. El rojo congo es muy frecuentemente utilizado en la observación de los basidiomicetes. Personalmente, no lo diluyo. Pero sí que hay que aplicar una gota pequeña, porque si no se vuelve todo tan rojo que ya no podemos observar nada. Tengamos no obstante en cuenta que, si queremos estudiar un badiomycete debemos tener varios ejemplares, porque hay características que sólo se pueden observar en los jóvenes y otras en los maduros. Un ejemplar muy maduro se vuelve un mundo de esporas y ya no podemos discernir nada.
El azul de lactofenol se utiliza, entre otras cosas, para poner de manifiesto la ornamentación de las esporas. Por ejemplo, es muy utilizado con las Scutellinia, Las Peziza o las Cheylimenia, en las que la ornamentación es esencial para ayudar en la identificación.
IKI y reactivo de Melzer son muy utilizados con los ascomicetes, como indica Josep. Pero recordemos que siempre debemos preparar también pruebas en agua.
Podemos citar más reactivos, pero con esos 4, más o menos, tienes para ir tirando. El mundo de la micología es tan amplio, que no podemos abarcarlo todo de sopetón. En micrscpía, según mi parecer, conviene ir formándose con géneros que resultan más fáciles antes de meterse en líos complejos. No hay cosa que cause más insatisfacción que no estar seguro al 100% de una identificación, después de un estudio pormenorizado.
Un abrazo.
Gracias Pedro, no te muevas de aquí, Fungipedia no es lo mismo sin tí, en cuanto a la microscopía de Hohenbuehelia nigra, encaja a la perfección con mi propuesta.
Si la he presentado como fea, es porqué cuando me la encontré creí que se trataba de un Crepidotus pasado, fué solo a pasarla por el micro que ví que por los cistidios y queilocistidios (típicos del género Hohenbuehelia) no encajaba con Crepidotus y pude comprobar que se trataba de una especie en perfectas condiciones y en un momento óptimo para su estudio, aunque me dió bastante trabajo la jodida para su correcta identificación.
Un fuerte abrazo, maestro ;)
Si la he presentado como fea, es porqué cuando me la encontré creí que se trataba de un Crepidotus pasado, fué solo a pasarla por el micro que ví que por los cistidios y queilocistidios (típicos del género Hohenbuehelia) no encajaba con Crepidotus y pude comprobar que se trataba de una especie en perfectas condiciones y en un momento óptimo para su estudio, aunque me dió bastante trabajo la jodida para su correcta identificación.
Un fuerte abrazo, maestro ;)
Virgen santa lo que aprende uno aquí con vosotros. Voy a empezar poco a poco (aunque soy más de intentar ir rápido y me vuelvo loco, la ventaja es que en la micro tengo ayuda) y con esto que me comentáis, trataré de ir avanzando. Ahora sólo me falta coger unas muestras para ir practicando, pero bueno, eso es la parte más entretenida del asunto. :laugh: