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Hola Laura, la primera de tus imágenes me descoloca, entiendo que los tonos rosados son un reflejo de la cámara, solo considerando la segunda y la tercera, tiene toda la pinta de tratarse de Mycetinis alliaceus, antes Marasmius alliaceus, deberías haber comprobado si realmente olían a ajo.
Saludos.
Hola.
Otra de las que tenía pendientes de identificación del encuentro de Candanchú, esta es del 17 de agosto, sobre madera del suelo en descomposición, la secuenciación del gen ITS, confirma una coincidencia del 100% con la:
Sidera vulgaris (Fr.) Miettinen
Los poros a 20 aumentos:
Los mismos poros a 40 aumentos:
Sección del basidioma a 40 aumentos:
Las hifas subiculares en solución de Rojo Congo:
Las hifas subhimeniales en el mismo medio:
Las hifas en solución de KOH:
Las hifas en reactivo de Melzer:
Las hifas del borde de los disepimentos en solución de Rojo Congo:
Los basidios en Rojo Congo:
Los basidios en reactivo de Melzer:
Los basidios en solución de KOH:
Una ampliación de los basidios en solución de Rojo Congo diluido:
Y por último las esporas en agua:
Estas esporas obtenidas por esporulación natural y en agua con unas medidas de:
(3.4) 3.6 - 4.1 (4.2) × (1.1) 1.2 - 1.4 (1.5) µm
Q = (2.5) 2.7 - 3.3 (3.6) ; N = 20
Me = 3.8 × 1.3 µm ; Qe = 3
Añado una imágen con el árbol filogenético:
Aquí vemos a mi propuesta perfectamente alineada dentro del Clado de lo que se puede considerar como Sidera vulgaris.
Saludos.
Hola.
Un Corticial del 19 de agosto pasado, bajo hayas y avellanos, sobre una pequeña rama del suelo en descomposición, con un himenio ligeramente hidnoide, al no observar en las muestras preparadas suficientes cistidios, para poder confirmar su identidad, tuve que recurrir al análisis molecular, con el resultado de la secuenciación del gen ITS no hubo sorpresas y dictaminó que se trataba con una coincidencia del 100% del:
Hyphoderma transiens (Bres.) Parmasto.
Superficie del basidioma a 20 aumentos:
La misma superficie a 30 aumentos:
Las hifas subiculares, en ocasiones con abundantes cristalizaciones:
Las hifas subiculares en solución de Rojo Congo:
Las hifas subiculares en solución de KOH:
Las hifas subhimeniales en el mismo medio:
Hifas en reactivo de Melzer, con fíbulas:
Cistidios cilíndricos dispersos en el himenio:
Los basidios en solución de Rojo Congo diluido, con unas medidas de (12) 13.9 - 19.9 (21.1) × (4.3) 4.5 - 5.1 (5.3) µm., Me = 16.4 × 4.8 µm.
Los basidios en reactivo de Melzer:
Los basidios en solución de KOH:
Las esporas en reactivo de Melzer, inamiloides:
Y por último las esporas en agua:
Estas esporas obtenidas por esporulación natural y en agua con unas medidas de:
(8.3) 9.2 - 11.4 (12.4) × (3.3) 3.5 - 4.1 (4.3) µm
Q = (2.3) 2.5 - 3 (3.2) ; N = 40
Me = 10.4 × 3.7 µm ; Qe = 2.8
Para cerrar el tema añado una imágen con el árbol filogenético:
En el árbol vemos a mi especie perfectamente alineada con las secuencias de la Hyphoderma transiens.
Saludos.
Hola Joshuat, solo indicar que actualmente debemos denominarla como Candolleomyces candolleanus, es una seta muy abundante que veo en casi todas mis salidas por estas fechas, y que aunque la consideres como comestible, en mi opinión jamás se me ocurriría el probar eso.
Aquí en nuestra casa, la consideramos como "no comestible"
https://www.fungipedia.org/hongos/psathyrella-candolleana.html
Saludos 🙂
Hola.
Un Inocybe que tenía pendiente de identificación de la salida de Primavera, con los compañeros de la Asociación Micológica de Castellón (Asmicas), del 9 de mayo pasado, con los Inocybes la mayoría de las veces para poder llegar a su correcta identificación, debemos recurrir al análisis molecular, la secuenciación del gen ITS, determinó que se trataba con una coincidencia del 100% de:
Inocybe lutescens Velen.
Las hifas de la suprapellis en agua:
Por debajo de estas unas hifas ya más anchas y con pigmento intracelular pardo:
Caulocistidios de la parte alta del pie:
Caulocistidios de la parte media del pie:
Hifas de la parte baja del pie, ya sin caulocistidios, solo con algunas pocas hifas terminales con el ápice redondeado:
Queilocistidios abundantes en la arista laminar, con cristalizaciones apicales y unas medidas de (54) 55.3 - 63.7 (64.7) × (12.4) 12.8 - 16.6 (18.6) µm., con una media de Me = 59.8 × 14.9 µm.:
Pleurocistidios dispersos de gran tamaño en la cara laminar, con unas medidas de (56.5) 65.3 - 80.8 (83.3) × (14.1) 14.8 - 18.2 (19.8) µm., con una media de Me = 72.6 × 16.4 µm.:
Una imágen con la anchura de la pared de los pleurocistidios:
Los basidios con unas medidas de (25.9) 27.5 - 32.6 (34.4) × (8.3) 8.6 - 9.3 (9.8) µm., con una media de Me = 30.5 × 8.9 µm.:
Y por último las esporas:
Estas esporas obtenidas por esporulación natural y en agua con unas medidas de:
(8.7) 9.7 - 11.7 (12.3) × (4.8) 5 - 5.7 (6.1) µm
Q = (1.7) 1.8 - 2.2 (2.3) ; N = 30
Me = 10.6 × 5.4 µm ; Qe = 2
Para cerrar el tema dejo el árbol filogenético:
En el árbol vemos a mi especie alineada al 100%, con la secuencia del material tipo de la Inocybe lutescens, y en un Clado cercano vemos la Inocybe nitidiuscula y la Inocybe involuta.
Saludos.
Hola.
Reabro este tema porqué en la identificación del Inocybe y que dejé como Inocybe flocculosa, ante la duda que me surgió en el momento de presentarlo, solo por la anchura de la pared de los pleurocistidios, (un dato importante a tener en cuenta a nivel taxonómico), tal y como ya lo indiqué en su momento, para salir de dudas como de costumbre no me quedó mas remedio que recurrir al análisis molecular, la secuenciación del gen ITS determinó que se trataba con una coincidencia del 100%, de Inocybe fuscidula, no de Inocybe flocculosa, con una microcopía prácticamente idéntica, pero por supuesto con unos pleurocistidios con una pared más estrecha, añado el árbol filogenético:
Mi propuesta se puede ver bien alineada dentro del Clado de lo que se puede considerar como Inocybe fuscidula.
Saludos.