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Hola.
Un pequeño Entoloma del 18 de agosto pasado, soy plenamente consciente de la enorme dificultad que entraña el identificar correctamente los Entolomas, pero en este caso atendiendo a sus características, tales como su pequeño tamaño (menos de 1 cm.), su sombrero umbilicado (Omphaliforme), sus láminas decurrentes, la ausencia de queilocistidios y sus esporas con una longitud de media por debajo de las 10 micras, todas las claves de que dispongo me conducen al:
Entoloma incarnatofuscescens (Britzelm.) Noordel.
Agradecer desde aquí a Àngel Torrent, que me facilitara el ejemplar para su estudio.
Aunque parecía brotar directamente del suelo, lo hacía asociado a un hayuco en descomposición:
Superficie de la cutícula del sombrero, finamente escamosa, a 40 aumentos:
Las láminas a 40 aumentos:
Las hifas de la capa superficial de la cutícula (suprapellis), con unas hifas cortas, subglobosas a piriformes, con pigmento intracelular de color pardo:
Por debajo de esta capa, unas hifas ya más hialinas y filamentosas:
La arista laminar, sin elementos diferenciados de los basidios:
Los basidios de la cara laminar:
Las esporas en solución de Rojo Congo diluido al 0,5%:
Y por último las esporas en agua:
Estas esporas maduras libres en agua con unas medidas de:
(7.9) 8.3 - 9.5 (10.2) × (5.4) 5.9 - 7 (7.3) µm
Q = 1.3 - 1.5 (1.7) ; N = 30
Me = 8.9 × 6.4 µm ; Qe = 1.4
Saludos.
Hola.
Sobre unas espigas de Avena sterilis, otra del encuentro en Candanchú con el grupo de "Micoamigos".
Agradecer a Javier Marcos Martínez, que me facilitara todo el material para su estudio.
Ustilago avenae (Pers.) Rostr.
Un par de imágenes de los granos afectados a 15 aumentos:
Una imágen a 20 aumentos:
Una especie muy poco agradecida al microscopio, con solo unas hifas del micelio secundario, anchas e hialinas, que van produciendo en la pared celular unas clamidosporas, consideradas como algunos micólogos como "teliosporas".
Las hifas en agua:
Y por último las clamidosporas, teliosporas o como se quiera llamar a esto:
Estas clamidosporas en agua con unas medidas de:
(5.8) 6 - 7.2 (7.7) × (5.5) 5.7 - 6.7 (7.2) µm
Q = 1 - 1.09 (1.1) ; N = 30
Me = 6.5 × 6.2 µm ; Qe = 1
Saludos.
Gracias Javi, bonito repertorio.
En cuanto a la última, ya sabes que yo sin micro ando completamente perdido, pero con este interior tan negro y que además en la última imágen parece pulverulento, apostaría a que se trata de un Mixo, por opinar algo, hasta quizás Fuligo septica var. candida = Fuligo candida un poco pasada.
En cuanto al Leucocoprinus, con esta pinta, consideraría como probabilidad también el Leucocoprinus fragilissimus.
Saludos 🙂
Hola.
Al lado de la Mollisia ventosa que presenté ayer, al observar las muestras en el laboratorio con la lupa binocular, me apercibí de la presencia de otro hongo, de muy reducidas dimensiones, a modo de diminutos granos negros, el:
Lophiostoma glabrotunicatum Ying Zhang, J. Fourn. & K.D. Hyde
Zona en donde se encontraban los peritecios:
Unas imágenes de los peritecios a 40 aumentos:
Las hifas de la pared del peridio:
El himenio con los ascos:
Los ascos en Reactivo de Melzer:
Las paráfisis en el mismo medio:
Y por último unas pocas ascosporas libres en agua:
Estas ascosporas maduras libres con unas medidas de 24.9 - 30.8 × (6.3) 6.34 - 7.3 µm., con una media de Me = 27.6 × 6.9 µm.
Saludos.
Hola.
Un discomiceto del pasado 19 de agosto, sobre madera del suelo húmeda en descomposición, en un punto del Pirineo Francés donde predominaban las hayas, la:
Mollisia ventosa (P. Karst.) P. Karst.
Lo apotecios a 20 aumentos:
Las hifas marginales en agua:
Las hifas del excípulo medular en agua:
Las hifas del excípulo ectal en el mismo medio:
Los ascos en agua:
Los ascos en Melzer, con una tímida reacción amiloide de su aparato apical:
Los ascos en solución de Lugol, con un comportamiento muy parecido al Melzer:
Los ascos en Melzer, previo tratamiento durante diez minutos con KOH al 10%, en este caso el aparato apical ya se hace más visible:
Las paráfisis en agua:
Y por último las esporas en agua:
Estas esporas obtenidas por esporulación natural y en agua con unas medidas de:
(12.5) 12.7 - 17.3 (20.6) × (2.7) 2.9 - 3.6 (3.9) µm
Q = (3.6) 4.2 - 5.4 (6.2) ; N = 40
Me = 15.1 × 3.2 µm ; Qe = 4.7
Saludos.
Hola.
Otra especie que he podido estudiar gracias al encuentro de Candanchú.
Agradecer a Javier Marcos Martínez, el que me facilitara las hojas parasitadas para su estudio, sobre Convolvulus, tenemos el:
Erysiphe convolvuli DC.
La superficie parasitada a 15 aumentos:
La misma superficie a 40 aumentos:
Hifas a modo de conidióforos, anchas e hialinas:
Lo que se supone serían las hifas conidiógenas:
Sus grandes conidios en solución de Rojo Congo:
Y para terminar un par de imágenes de los conidios en agua:
Estos conidios con unas medidas en distintos medios de:
(25) 32.8 - 49.5 (53.2) × (9.7) 11.9 - 17.9 (19.2) µm
Q = (2.1) 2.2 - 3.1 (3.2) ; N = 30
Me = 40.5 × 15.1 µm ; Qe = 2.7
Saludos.
Hola.
Un hongo Coprinoide que aparecí de propina en el mismo sustrato del Pseudocoprotus catenipilus y del Cladorrhinum coprophilum, después de cultivar las muestras en cámara húmeda por un espacio de 15 días, con un ciclo de vida muy efímero, de apenas unas horas, la Coprinopsis ephemeroides, actualmente denominada:
Narcissea ephemeroides (DC.) T. Bau, L.Y. Zhu & M. Huang, in Zhu, Huang & Bau
El basidioma a las pocas horas de aparecer, ya con las láminas licuadas, a 15 aumentos:
Una ampliación del sombrero:
Y las láminas a 15 aumentos:
Las hifas de la cutícula en agua:
Las hifas del estípite a 400 aumentos, con restos de velo en su superficie:
Las hifas del estípite a 1000 aumentos:
Las hifas del velo en agua:
Unos pocos cistidios observados:
Y por último las esporas:
Estas esporas maduras libres con unas medidas en agua de:
(6.6) 7.2 - 8.1 (8.2) × (5.4) 5.9 - 6.9 (7.3) µm
Q = (1.1) 1.12 - 1.3 (1.4) ; N = 30
Me = 7.6 × 6.3 µm ; Qe = 1.2
Saludos.
Hola.
Otra del encuentro de Candanchú, sobre suelo nitrogenado, del 19 de agosto pasado, un Conocybe con solo caulocistidios lecitiformes (Sección Conocybe), la:
Conocybe brunnea J.E. Lange & Kühner ex Watling
Láminas a 20 aumentos:
Las hifas de la suprapellis en solución de Rojo Congo diluido:
Los caulocistidios lecitiformes:
Los queilocistidios con una longitud de entre (25.1) 26 a 31.4 (34.4), y una anchura de la cabeza de entre (3.6) 4.2 a 5.3 (5.5) µm.:
Los basidios de la cara laminar:
Los basidios en solución de amoníaco:
Y por último las esporas:
Estas esporas maduras libres con unas medidas de:
(6.9) 7.3 - 8.3 (8.6) × (3.8) 4 - 4.7 (4.8) µm
Q = (1.6) 1.7 - 1.9 (2) ; N = 30
Me = 7.8 × 4.4 µm ; Qe = 1.8
Saludos.
Hola David, la Rhodocollybia maculata la tienes que descartar por varias razones, la primera porqué es exclusiva de coníferas y además las esporas no son globosas, sino subglobosas a ovoides, con un cociente Q de 1 a 1,3, te dejo el enlace de mi ficha con la microscopía:
https://www.fungipedia.org/microscopias/josep/rhodocollybia-maculata
Esto coincide perfectamente con el estudio realizado a la misma por mi buen amigo Enrique Rubio, dejo asimismo el enlace de su trabajo:
https://www.centrodeestudiosmicologicosasturianos.org/?p=23746
En hayedo y con esta pinta, Gymnopus confluens, actualmente Collybiopsis confluens, parece ser la opción más probable.
https://www.fungipedia.org/microscopias/josep/collybiopsis-confluens
Un abrazo 😉