Reabro este tema ya que me parece poder aportar algo de luz al tema.
En primer lugar agradecer a Jesús M. Riezu, su opinión en privado al respecto y por colocarme en el camino correcto.
Quizá me precipité al opinar que estábamos ante una Hyphodontia sin determinar, ya que aunque no disponemos de ninguna secuencia de la especie en el NCBI, si que ya estaría descrita y se trataría de la Hyphodontia tuberculata, actualmente Xylodon tuberculatus (Kotir. & Saaren.) Hjortstam & Ryvarden (2009).
Después de dedicar 11 años a la micologia profunda, debo admitir que sigo siendo un novato en muchos aspectos, aunque si algo he aprendido durante estos años es que si un par de especies se encuentran muy cercanas a nivel molecular, esto se va a traducir al ámbito microscópico y ambas van a presentar una microscopía muy parecida, en este caso ya tenía muy claro desde el principio que debería de tratarse de una Hyphodontia cercana a la Hyphodontia pallidula, especie que tal y como he indicado ya me he encontrado hasta en 11 ocasiones, siempre sobre madera de pino y muy especialmente sobre madera de Pinus sylvestris.
Resulta muy curioso, casi incomprensible que a día de hoy (2026), aun no dispongamos en el NCBI de ninguna secuencia de la Hyphodontia tuberculata, mientras que en otros Aphyllophorales como el Gloeoporus taxicola = Meruliopsis taxicola, dispongamos de hasta 686 secuencias registradas debidamente en GenBank, algo que hace realmente difícil el poder elaborar un árbol filogenético medianamente decente, ya que sería simplemente un monográfico.
Saludos.

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Hola.
Una Mycena del 6 de diciembre pasado, fotografiada en el Pinar de Zuera (Zaragoza).
Como que teniendo en cuenta sus características microscópicas, y siguiendo varias Claves del género no pude llegar a ninguna propuesta medianamente convincente, opté como siempre por el análisis molecular, la secuenciación del gen ITS apuntó claramente a la Mycena galopus.
De la Mycena galopus ya creo haberla estudiado una vez, correspondiente a una recolecta efectuada el 2 de diciembre de 2018, en aquella ocasión con una microscopía completamente distinta, pero que se correspondía perfectamente con la descripción del trabajo de Aronsen, vaya que no se parecía en nada, como un huevo a una castaña.

Mycena galopus (Pers.) P. Kumm.

 

 
 

Las hifas de la suprapellis, sin digitaciones o en todo caso prácticamente imperceptibles, en solución de Rojo Congo diluido:
 

Las hifas de la suprapellis en Reactivo de Melzer, con un comportamiento débilmente dextrinoide:
 
 

Cualocistidios abundantes, en especial en la parte alta del pie.
Los caulocistidios en solución de Rojo Congo:
 
 

Las hifas del estípite, dispuestas paralelamente y fibuladas:
 

Los queilocistidios, cilíndricos, sinuosos, muchos de ellos incluso capitados y con digitaciones gruesas abundantes.
Queilocistidios en solución de Rojo Congo:
 
 
 
 
 

Los queilocistidios en Reactivo de Melzer:
 

Los basidios en solución de Rojo Congo:
 
 

Los basidios en Reactivo de Meñzer:
 

Y una composición de unas pocas esporas libres observadas:
 

Estas esporas libres con unas medidas de:
(6.4) 6.8 - 9.2 (9.7) × 4 - 5.1 (5.5) µm
Q = (1.5) 1.55 - 1.9 (2.2) ; N = 18
Me = 8.1 × 4.7 µm ; Qe = 1.7

Pongo una captura de imágen con la microscopia que siguiendo el criterio de Aronsen, debería presentar la Mycena galopus:
 
Aronsen cita unas medidas para las esporas de la Mycena galopus de 10-14 x 5-6 µm, Q 1.9-2.6, Qav~2.1, unas medidas considerablemente por encima de las de mi estudio, al igual que el cociente Q, en mi caso de Qe=1.7 y según Aronsen de Qe=2.1, además la morfología de los queilocistidios los describe como "fusiformes, pero también claviformes u obovoides, simples o furcados", nada que ver con mis imágenes, tampoco encajan las imágenes de la pileipellis que Aronsen la describe con "hifas de 1 a 3,5 µm de ancho, ramificadas, cubiertas de escasa a densamente con excrecencias de 2 a 4,5 micras, nada que ver con el presente estudio.

Añado para poder comparar un par de imágenes de mi estudio realizado a la especie en 2018:
 
 

En las imágenes podemos ver que mi microscopía encaja como un guante con la del trabajo de Aronsen, al igual que las medidas de las esporas, en mi estudio de:
(8.2) 8.8 - 10.9 (11.8) × (4.2) 4.5 - 5.1 (5.5) µm
Q = (1.7) 1.8 - 2.26 (2.3) ; N = 24
Me = 9.8 × 4.8 µm ; Qe = 2

Para cerrar el tema añado una imágen con el árbol filogenético:
 

Vemos mi especie alineada perfectamente dentro del Clado de lo que molecularmente podemos considerar como Mycena galopus.

Saludos.

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Hola.
Un muy diminuto ascomiceto localizado el el Pinar de Zuera (Zaragoza), durante el Congreso de la SIM el día 6 de diciembre pasado.
Agradecer a Hans Otto-Baral, su enorme ayuda en la identificación de la especie.

Calycellina aff. alniella Baral.

Ascomas muy diminutos, amarillentos, con peciolos muy cortos y rudimentarios, verdosos en ejemplares maduros, que brotan de la superficie de hojas del suelo en descomposición de Quercus rotundifolia.
 

 

De tan solo 0,2 a 0,4 mm de diámetro.
Los ascomas a 40 aumentos:
 
 
 

Hifas basales alargadas, dispuestas paralelamente y pigmentadas.
Las hifas basales en agua:
 
 

Hifas del excípulo de textura globoso-angular, las hifas del excípulo en reactivo de Melzer:
 
 

Ascos octosporóricos, con una reacción amiloide de su diminuto aparato apical, y aunque es difícil observarlos en algunos de estos ascos, me pareció ver uncínulos.
Los ascos en agua:
 
 
 

Los ascos en reactivo de Melzer:
 
 
 

Base de los ascos con los supuestamente uncínulos en Reactivo de Melzer:
 

Y por último unas imágenes de esporas maduras libres en agua:
 
 
 

Ascosporas fusiformes con extremos puntiagudos, dos o tres gotas lipídicas grandes y varias más pequeñas dispersas, con unas medidas de estas ascosporas libres en agua de:
(14.3) 16 - 19.3 (22) × (2.8) 3.1 - 4.3 (4.5) µm
Q = (4.2) 4.3 - 5.5 (5.7) ; N = 40
Me = 17.8 × 3.6 µm ; Qe = 4.9

En este estudio el análisis molecular solo sirvió para poder acercar a la especie a un género determinado, como que en el Blast apuntaba a géneros como Calycellina o Mollisina, es por lo que decidí elaborar un árbol filogenético utilizando secuencias de todas las especies de que disponemos de ambos géneros en GenBank, dejo el resultado:
 

Llegado a este punto y ante un panorama nada clarificador, es cuando Baral me pide los archivos del análisis molecular, ya que él dispone de muchas más secuencias que nom están disponibles en GenBank, dejo una imagen del árbol filogenético que me hizo Baral:
 

Y una ampliación de lo que realmente me interesa:
 

Aquí mi propuesta se alinea en una posición bastante carcana, a una secuencia de la Calycellina alniella.
Según el criterio de Index Fungorum a la Calycellina alniella, actualmente la deberíamos denominar como Calycina alniella.
Al comentar esta circunstancia con Baral, su respuesta literal fue la siguiente:"Calycina alniella fue una idea mía más antigua (1985), o digamos que la consideraba una Pezizella, pero cambié ese género a Calycina, siendo Pezizella el sinónimo más reciente.
Más tarde me convencí de que es una Calycellina, que está conformada por ADN."

Entiendo pues que esto se podría deber a una falta de actualización por parte de Index Fungorum, o ya una falta de interés por parte de Baral, para revertir el entuerto.

Queda pues hasta que nuevos estudios indiquen lo contrario, como lo más parecido que tenemos actualmente, es decir Calycellina aff. alniella.

Este trabajo está guardado por Baral, dentro de su página "In vivo veritas", dentro de las Pezizellaceae, dentro del apartado de Claycellina con 8 esporas, dejo el enlace:
drive.google.com/drive/folders/1IcOyTf5n...kxxZhYVZub0N1aGY5YTg

Saludos.

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Hola.
Una Inocybe pendiente de la recogida de muestras del pasado 3 de enero, con Cándido Sos y Jorge Juan Martín, por el desierto de Las Palmas.
Una Inocybe con unas peculiares características, con la que no le perdí mucho el tiempo en intentar identificar, y opté ya directamente por el análisis molecular.
La secuenciación del gen ITS da una coincidencia por identidad del 100% con la:

Inocybe romana Lonati.

 

 

Detalle de la base del estípite, sin ensanchamientos:
 

Hifas de la suprapellis en agua:
 
 

Caulocistidios de la parte alta del pie:
 
 

Hifas de la parte media del pie, con muy pocas hifas terminales cilíndricas, que ni tan siquiera puedo considerar como caulocistidios:
 
 

Hifas de la parte baja del pie, sin caulocistidios:
 

Queilocistidios y pleurocistidios con un exudado amorfo en su superficie, y que en algunos casos aislados se pueden observar cristalizaciones, aunque muy escasas, estos pleurocistidios con unas medidas de (41.3) 48.5 - 63.3 (67.6) × (11.2) 15 - 17.6 (20.6) µm., Me = 55.4 × 16 µm.
 
 
 
 

Los basidios de la cara laminar:
 
 

Las esporas en reactivo de Melzer, con un comportamiento débilmente dextrinoide:
 

Las esporas en solución de KOH, sin ninguna reacción aparente:
 
 

Y por último las esporas en agua:
 
 
 

Estas esporas obtenidas por esporulación natural y en agua con unas medidas de:
(8.2) 8.7 - 10.6 (11.9) × (4.8) 5 - 5.5 (5.7) µm
Q = (1.5) 1.7 - 2 (2.2) ; N = 40
Me = 9.6 × 5.3 µm ; Qe = 1.8

De la Inocybe romana apenas podemos disponer de información en línea, apenas solo una descripción de Fermín Pancorbo en el documento de octubre de 2015 "Estudio de la micobiota de los ecosistemas dunares de la Península Ibérica e Islas Baleares III", transcribo esta descripción:
"Píleo convexo, normalmente con un pequeño umbón central, higrófano, de color ocráceo casi uniforme a pardusco en ejemplares más húmedos, de 18-25 × 6-8mm de diám. Cutícula finamente fibrilloso-lanosa, sobre todo hacia el margen, que en muchos casos presenta restos de una velipelis blanquecina sobre el píleo y más común sobre el margen. Láminas medianamente apretadas, con lamélulas (l=1-5), adnatas a libres, sinuosas, de color ocráceo claro en los ejemplares jóvenes a pardusco en los maduros, arista fimbriada más pálida que el resto. Estípite cilíndrico, lleno, de color ocráceo, cubierto por fibrillas blanquecinas longitudinales, más evidentes en los ejemplares jóvenes, de 24-45 × 3-5 mm. Cortina no observada, aunque se aprecian restos velares en el margen piléico y estípite en los ejemplares más jóvenes. Carne blanquecina con olor subespermático, que en algún caso recuerda al pelargonio.
Basidiosporas (correspondientes a todo el material estudiado), ovoides a subamigdaliformes, con ápice subcónico, en el cual se observa en algún caso un estrechamiento de la pared esporal, dando la apariencia de un pseudoporo, de (7,3-)8,1-10,2(-11,6) × (4,4-)4,8-5,9(-6,4) μm, Q = (1,4-)1,6-1,9(-2,1), N = 202, Me = 9,3 × 5,3 μm , Qe = 1,7. Basidios claviformes tetraspóricos, alguno con contenido amarillento. Pleurocistidios claviformes a utriformes, con el ápice redondeado a subcapitado, que en algunos casos presenta un exudado más o menos amarillento en potasa (NH4OH), dándole un aspecto de aura, de (46,3-)55,2-76,4(-83,6) × (15,6-)16,7-22,1(-28,0) μm, N = 54, Me = 66,2 × 19,6 μm, de paredes delgadas, con un espesor que no llega a 1 μm. Queilocistidios similares a los pleurocistidios, con paracistidios claviformes de paredes finas. Caulocistidios ausentes o presentes solo en el ápice del estípite, similares a los queilocistidios pero de morfología parecida a pelos caulocistidioides."

Descripción que parece encajar perfectamente con los datos del presente estudio.

Ya para terminar añado una imágen del árbol filogenético:
 

En el árbol, mi especie se encuentra perfectamente alineada dentro del Clado de lo que se considera como Inocybe romana, y como especies más cercanas a nivel molecular tenemos la Inocybe aeruginascens, la Inocybe hystrix, la Inocybe naekkii, y ya un poco más alejadas la Inocybe nitidiuscula y la Inocybe sororia.

Saludos.

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Hola.
Un Mixomiceto recolectado el pasado lunes en las cercanías de Playa Esmeralda (República Dominicana), una playa al norte de la Isla y cercana a la localidad de Miches.
Ejemplares fusionándose unos con otros y apareciendo de manera abundante sobre la madera de un tallo del suelo en descomposición de Coccoloba uvifera (Uva de mar).
La casualidad ha querido que compartiera el mismo apellido que el Annulohypoxylon que presenté ayer.

Badhamia nitens Berk.

 

 

Los esporocarpos sesiles a 20 aumentos:
 

Los esporocarpos a 40 aumentos, en los que en su interior ya se puede intuir el capilicio (de color blanco):
 
 
 

Membrana a 400 aumentos:
 

Membrana en agua a 1000 aumentos:
 
 

Abundantes gránulos de calcio en agua:
 

El capilicio hialino en agua:
 
 
 

Esporas a 400 aumentos, agrupadas en grupos de entre 4 a 20 esporas:
 
 

Uno de estos grupos a 1000 aumentos:
 

Las esporas en agua:
 
 
 

Estas esporas en función del plano observado, en su perímetro se puede apreciar su aspecto claramente espinoso, característico de la especie, ver miniatura superior izquierda:
 

Estas esporas verrucosas con unas medidas en agua sin contar la ornamentación de:
(10.1) 11.3 - 13.7 (14.3) × (9) 10.6 - 12.7 (13.4) µm
Q = 1 - 1.16 (1.2) ; N = 36
Me = 12.6 × 11.7 µm ; Qe = 1.1

Saludos.

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Gracias Javi, este tema probablemente lo vuelva a reabrir próximamente ya que todo parece indicar que de nuevo me he topado con la especie, fue este pasado lunes y aquí en la República Dominicana, parece ser que esta especie estaría más extendida de lo que a priori parece.
Saludos wink.png
 

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Gracias Javi, un dato que no conocía ya que para su determinación utilicé las Claves del género para especies del Continente Americano, aunque admito que pronto llegará el momento en el que sin datos moleculares se nos va a hacer difícil el defender una u otra opción.
Un abrazo.

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Claro Javi, es que si los datos moleculares, nadie dispone de argumentos para defender lo contrario, además de la enorme cercanía de ambas a nivel molecular.
Un abrazo smile.png

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