Hypomyces aurantius y unos cuantos temas pendientes mas.

Hola a tod@s.
Como que la cosa está un poco floja toca estudiar temas pendientes del pasado, que en su momento no pude identificar.

El primero es un parásito de un Polyporal fotografiado el 15 de Noviembre de 2020, dicho Polyporal ya bastante degradado, sobre un tocón de chopo, aunque por su disposición y aspecto probablemente Oxyporus populinus. Dado que se trataba de un anamorfo (fase asexual) y al no poder dar con su identidad opté por el análisis molecular, la secuenciación ITS determinó que se trataba con una coincidencia del 100% de Hypomyces aurantius (MH459151)





Una ampliación a 20 aumentos:


Unas imágenes de los conidióforos o hifas conidiógenas:








Los conidios a 400 aumentos:


Y los mismos conidios a 1000 aumentos:


Las medidas de los conidios de:
(11.7) 12.6 - 15.8 (18.1) × (6.3) 7.1 - 8.5 (8.7) µm
Q = (1.5) 1.7 - 2 (2.1) ; N = 30
Me = 14.4 × 7.7 µm ; Qe = 1.9

Seguimos con otro anamorfo, este es del pasado 1 de Enero brotando sobre un tronco cortado de planifolio, al lado de unos ejemplares de Nectria peziza .
Con unos conidióforos dispuestos verticalmente con una base ancha común que recuerdan a un Gliocladium.
Conidios cilíndricos que se tiñen con el Rojo Congo y unas medidas de:
(4.9) 5.8 - 6.6 (6.8) × (0.8) 1.1 - 1.4 (1.5) µm
Q = (4) 4.5 - 6.1 (7.8); N = 30
Me = 6,2 x 1,2 µm; Qe = 5.2
Hifas de pared ancha con septos simples y pigmento de color marrón.
En un primer momento pensé en que quizás podría tratarse del anamorfo de la misma Nectria peziza, de la cuál no existe documentación.
La imagen del tronco:


En el círculo rojo los ejemplares de Nectria peziza, por su aspecto y las características microscópicas, Baral opinó que probablemente se trataría del anamorfo de Lasiobelonium variegatum, propuesta muy plausible ya que en el círculo amarillo he marcado unos apotecios que podrían coincidir perfectamente con Lasiobelonium (por desgracia estos no los apercibí en el momento de la recogida y se quedaron en el tronco), nos habrían disipado dudas.

Un par de ampliaciones a 40 aumentos:




Las hifas contextuales a 400 aumentos:


Y las mismas a 1000 aumentos:


Los conidióforos a 1000 aumentos:




Y los conidios en solución de Rojo Congo diluido a 1000 aumentos:


En el debate sobre su posible identidad Viktorie Halasu, opinó que lo veía muy similar a Sarcopodium, posteriormente Thomas Læssøe me facilitó un estudio de un anamorfo idéntico al de mi propuesta, dejo el enlace:
svampe.databasen.org/observations/10153810
El mismo Thomas Læssøe, lo tiene identificado como Sarcopodium tortuosum (Wallr.) S. Hughes (1958). El género Sarcopodium, Baral lo guarda en sus archivos como posible anamorfo de Lasiobelonium. En espera de nuevas recolectas que ayuden a aclarar un poco la situación queda de momento como Sarcopodium cf. tortuosum
Agradecer a Hans-Otto Baral, Viktorie Halasu y Thomas Læssøe , su gran ayuda en la identificación de esta especie.

Una Eutypella del 29 de Noviembre de 2020, que a tenor de sus medidas esporales me generó bastantes dudas, el análisis molecular determinó que se trataba con una coincidencia del 100% de Eutypella cerviculata (GU062246)

En este estudio sus esporas con unas medidas de:
(7.3) 7.8 - 9 (9.6) × (1.8) 1.9 - 2.1 (2.2) µm
Q = (3.6) 3.8 - 4.4 (5) ; N = 40
Me = 8.4 × 2 µm ; Qe = 4.2
En un estudio anterior con unas medidas bastante por debajo, de 5,6;7,6 X 2,2;3,2 µm., parece que la Eutypella cerviculata puede presentar bastante variabilidad en cuanto a las medidas esporales, pudiendo llegar hasta las 11 µm. de largo.

Un Corticial con aspecto de Phlebia, este ya muy antiguo, las imágenes tomadas el 25 de Agosto de 2019, lo mas parecido que he podido encontrar con la ayuda de Marco Affligio (Aphyllo), es la Phlebia nothofagi, como que en su estudio nos surgieron algunas dudas, a día de hoy el tema está guardado como "Especie a revisar" en el subforo de Aphyllophorales de NaturaMediterraneo, por si en el futuro se pude concretar un poco más, queda pues de momento como Phlebia aff. nothofagi



Sus esporas inamiloides y con unas medidas en agua de:
(4.7) 4.9 - 5.9 (6.1) × (2.5) 2.7 - 3.1 (3.2) µm
Q = (1.5) 1.7 - 2 (2.1) ; N = 40
Me = 5.3 × 2.9 µm ; Qe = 1.8

Y para terminar unas pequeñas setillas fotografiadas el 25 de Octubre de 2020, por el sombrero deprimido y las láminas decurrentes pensé en un pequeño Clitocybe, como que la microscopía no me terminaba de encajar con el género, opté por el análisis molecular, la secuenciación ITS determinó que coincidía con dos, 100 % Tephrocybe striaepilea (KP192647) y 100 % T. platypus (KC962411).

Sus esporas con unas medidas de:
(4.8) 4.85 - 5.6 (5.9) × 2.9 - 3.3 (3.5) µm
Q = (1.5) 1.6 - 1.8 (1.9) ; N = 30
Me = 5.3 × 3.1 µm ; Qe = 1.7
El cociente Q esporal queda bastante lejos del que se atribuye a la Tephrocybe striaepilea (Q=1,2-1,4 (BON, 1999:115)), y coincide con la Tephrocybe platypus con unas medidas esporales según "les Champignons de Suisse" de 4,5-7,5 x 3,5-4,2 um (un poco por encima de las citadas en mi estudio); y un cociente Q = 1,3-2,0, totalmente acorde con mi estudio. También coinciden las medidas esporales con el documento de "funghiitaliani", en el que se indican unas medidas esporales de 5,05-7,20 x 3,10-3,87 µm.
Queda pues como muy probable Tephrocybe platypus (Kühner) M.M. Moser (1967)

Saludos a tod@s.

Gracias Juan Andrés, lo bueno de temas como este es que me he sacado hasta 4 "cromos nuevos".
Un abrazo